Publikationsserver der Universitätsbibliothek Marburg

Titel:Divergente Effekte der Substitutionstherapie auf polymorph-nukleäre Granulozyten beim hereditären α1-Antitrypsinmangel
Autor:Dresel, Marc
Weitere Beteiligte: Rembert Koczulla, Andreas (Prof. Dr. med.)
Veröffentlicht:2015
URI:https://archiv.ub.uni-marburg.de/diss/z2015/0511
URN: urn:nbn:de:hebis:04-z2015-05113
DOI: https://doi.org/10.17192/z2015.0511
DDC: Medizin
Titel (trans.):Divergent effects of substitution therapy on polymorph-nuclear granulocytes in hereditary alpha-1-antitrypsin deficiency
Publikationsdatum:2015-09-10
Lizenz:https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0

Dokument

Schlagwörter:
immunologic effects, Antitrypsin <alpha-1->, Granulozyt, Entzündung, Substitutionstherapie, Obstruktive Ventilationsstörung, Peroxidase, antitrypsin deficiency, Lunge, systemische Inflammation, polymorph nuclear granulocytes, Neutrophile Granulozyten, COPD, Myeloperoxidase, Metalloproteinase, Substitution, Augmentation

Zusammenfassung:
Hintergrund: α1-Antitrypsin (AAT) ist ein im Körper ubiquitär vorkommendes Akute- Phase-Glykoprotein das neben seiner Aufgabe als Antiprotease wichtige immunmodulatorische Funktionen erfüllt. Bei Patienten mit vererbtem α1-Antitrypsinmangel (AATM) kommt es aufgrund der relativ verringerten Serumkonzentration zu einer Unterschreitung des protektiven Antiproteasespiegels. Im langfristigen Krankheitsverlauf kommt es bei diesen Patienten häufig zu einer systemischen Inflammation und dem progredienten Fortschreiten eines panazinären Lungenemphysems, das dem Krankheitsbild der chronisch obstruktiven Lungenerkrankung stark ähnelt. Als Hauptproduzenten der gewebedestruierenden Proteasen stehen die polymorph-nukleären Granulozyten (PMN) im Fokus des emphysematischen Umbaus. Im Rahmen aktueller Studien werden weitere Effekte dieser Zellen am pathophysiologischen Prozess untersucht. Die einzige spezifische Therapie ist die wöchentliche Substitution mit humanem AAT. Aufgrund der bisher unzureichenden Datenlage zur klinischen Wirksamkeit steht die Substitutionstherapie in der Literatur noch immer im Mittelpunkt der Diskussion. Ziel: Ziel dieser Dissertation war es, die Effekte der Substitutionstherapie mit Prolastin® in Bezug auf die Aktivierung der PMNs in Patienten mit AATM zu untersuchen. Im Umkehrschluss sollten die Auswirkungen des hohen systemischen, inflammatorischen Potentials auf das infundierte AAT beobachtet werden. Methoden: Für die Studie wurden die PMN-Degranulationsmarker Matrix-Metalloproteinase-9 (MMP-9) und Myeloperoxidase (MPO) im Serum von 22 AATM-Patienten mit nachgewiesenem PI*ZZ-Genotyp direkt vor sowie zwei Stunden bzw. drei Tage nach der Infusion analysiert. Bei einem Patienten gelang die Verlaufsbeobachtung der Marker über eine Woche. Zusätzlich erfolgte die Bestimmung der unterschiedlichen AAT-Fraktionen im Serum der Patienten. Um die direkten Auswirkungen von Prolastin® und oxidiertem AAT beobachten zu können, wurden für die ex vivo Versuche PMNs von acht Patienten direkt vor und zwei Stunden nach Infusion isoliert. Anschließend wurden diese Zellen für vier Stunden mit Prolastin® bzw. chemisch oxidiertem AAT (oxAATc) stimuliert und die Effekte auf die Freisetzung von MMP-9, MPO und Interleukin-8 bzw. die neutrophile Adhäsion beobachtet. Die nachfolgenden Untersuchungen wurden mit den Werten nicht-substituierter AATM-Patienten bzw. gesunder Probanden verglichen. Ergebnisse: Zwei Stunden nach Infusion zeigten substituierte Patienten eine kurzzeitige Aktivierung der PMNs in Form einer Degranulation von MMP-9 und MPO parallel zum AAT-Serumanstieg. Am dritten Tag lagen beide Marker unter dem Niveau nicht-substituierter Patienten. Zusätzlich lagen sowohl die MPO, als auch die MMP-9-Serumspiegel an Tag 3 unterhalb der Ausgangswerte vor Substitution; im Falle von MPO war dieser Unterschied auch statistisch signifikant. Die Wochenverläufe bestätigten den Trend einer niedrigeren PMN-Aktivierung gegen Mitte der Woche. In den weiteren Serumanalysen zeigte sich eine nach Infusion gemessene Komplexierung und Oxidation des infundierten AATs, die sich auch im Wochenverlauf bestätigte. In den ex vivo Versuchen konnte bei allen Probandengruppen eine vermehrte PMN-Aktivität in Form einer Freisetzung von MMP-9, MPO und IL-8 durch die Stimulation von Prolastin® und oxAATc beobachtet werden. Prolastin® und oxAATc unterschieden sich in diesem Fall nicht voneinander. Die neutrophile Adhäsion zeigte sich im Allgemeinen keine Veränderung durch Stimulation mit Prolastin® oder oxAATc. Schlussfolgerung: Die MMP-9- und MPO-Degranulation deutet auf eine, zumindest kurzzeitige, infusionsbedingte Aktivierung der PMNs hin. Der anschließend relevante Abfall bis Tag 3 und darüber hinaus lässt indessen auf einen längerfristig anti-inflammatorischen Effekt der Substitutionstherapie schließen. Die Gründe für die kurzzeitige Aktivierung der PMNs sind zum jetzigen Zeitpunkt noch nicht vollständig geklärt. Die Ergebnisse lassen auf pleiotrope Effekte der Substitutionstherapie mit Prolastin® schließen. Das infundierte AAT scheint nach Infusion, zumindest teilweise, bei systemischer Inflammation zu oxidieren und höhermolekulare Komplexe zu bilden. OxAAT hat, abgesehen vom Verlust der Antiproteasefunktion und verglichen mit Prolastin®, keine zusätzlich krankheitsfördernden, immunologischen Effekte auf die PMNs in ihrer zentralen pathophysiologischen Rolle.

Bibliographie / References

  1. Vernooy JH, Küçükaycan M, Jacobs JA, Chavannes NH, Buurman WA, Dentener MA, et al. Local and systemic inflammation in patients with chronic obstructive pulmonary disease: soluble tumor necrosis factor receptors are increased in sputum. Am J Respir Crit Care Med. 2002 Nov;1218–24.
  2. Zhang B, Lu Y, Campbell- ‐Thompson M, Spencer T, Wasserfall C, Atkinson M, et al. Alpha1- ‐antitrypsin protects beta- ‐cells from apoptosis. Diabetes. 2007 May;1316–23.
  3. Wang W, Jian Z, Guo J, Ning X. Increased levels of serum myeloperoxidase in patients with active rheumatoid arthritis. Life Sci. 2014 Sep;19–23.
  4. Rahman I, Morrison D, Donaldson K, Macnee W. Systemic oxidative stress in asthma, COPD, and smokers. Am J Respir Crit Care Med. 1996;1055–60.
  5. Tuder RM, Zhen L, Cho CY, Taraseviciene- ‐Stewart L, Kasahara Y, Salvemini D, et al. Oxidative stress and apoptosis interact and cause emphysema due to vascular endothelial growth factor receptor blockade. Am J Respir Cell Mol Biol. 2003 Jul;88–97.
  6. Stoller JK, Rouhani F, Brantly M, Shahin S, Dweik RA, Stocks JM, et al. Biochemical efficacy and safety of a new pooled human plasma alpha(1)- ‐ antitrypsin, Respitin. Chest. 2002 Jul;66–74.
  7. Vernooy JHJ, Lindeman JHN, Jacobs JA, Hanemaaijer R, Wouters EFM. Increased activity of matrix metalloproteinase- ‐8 and matrix metalloproteinase- ‐9 in induced sputum from patients with COPD. Chest. 2004;1802–10.
  8. Stoller JK, Sandhaus RA, Turino G, Dickson R, Rodgers K, Strange C. Delay in diagnosis of alpha1- ‐antitrypsin deficiency: a continuing problem. Chest. 2005;1989–94.
  9. Rainger GE, Rowley AF, Nash GB. Adhesion- ‐dependent release of elastase from human neutrophils in a novel, flow- ‐based model: specificity of different chemotactic agents. Blood. 1998 Dec;4819–27.
  10. Viskum K, Kok- ‐Jensen A. Criteria for alpha 1- ‐antitrypsin substitution. Lung. 1990
  11. Summary E. American Thoracic Society/European Respiratory Society statement: standards for the diagnosis and management of individuals with alpha- ‐1 antitrypsin deficiency. Am J Respir Crit Care Med. 2003 Oct;818–900.
  12. Talecris Biotherapeutics Inc. FDA Approval: Alpha1- ‐Proteinase Inhibitor (Human): Prolastin. 2005.
  13. Vogelmeier C, Buhl R, Criee CP, Gillissen A, Kardos P, Kohler D, et al. [Guidelines for the diagnosis and therapy of COPD issued by Deutsche Atemwegsliga and Deutsche Gesellschaft fur Pneumologie und Beatmungsmedizin]. Pneumologie. 2007;e1–40.
  14. Zeng M, Li Y, Jiang Y, Lu G, Huang X, Guan K. Local and systemic oxidative stress status in chronic obstructive pulmonary disease patients. Can Respir J. 2013;35– 41.
  15. Wencker M, Fuhrmann B, Banik N, Konietzko N. Longitudinal follow- ‐up of patients with alpha(1)- ‐protease inhibitor deficiency before and during therapy with IV alpha(1)- ‐protease inhibitor. Chest. 2001 Mar;737–44.
  16. Thaler ER, Hanson CW. Medical applications of electronic nose technology. Expert Rev Med Devices. 2005;559–66.
  17. Swaim MW, Pizzo S V. Methionine sulfoxide and the oxidative regulation of plasma proteinase inhibitors. J Leukoc Biol. 1988 Apr;365–79.
  18. Tomasi TB, Hauptman SP. The binding of alpha- ‐1 antitrypsin to human IgA. J Immunol. 1974 Jun;2274–7.
  19. Van der Veen BS, de Winther MPJ, Heeringa P. Myeloperoxidase: molecular mechanisms of action and their relevance to human health and disease. Antioxid Redox Signal. 2009 Nov;2899–937.
  20. Puhan MA, Gimeno- ‐Santos E, Scharplatz M, Troosters T, Walters EH, Steurer J. Pulmonary rehabilitation following exacerbations of chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane database Syst Rev. 2011 Oct;CD005305.
  21. Sveger T. The natural history of liver disease in alpha 1- ‐antitrypsin deficient children. Acta Paediatr Scand. 1988;847–51.
  22. Pradella CO, Belmonte GM, Maia MN, Delgado CS, Luise APT, Nascimento OA, et al. Home- ‐Based Pulmonary Rehabilitation for Subjects With COPD: A Randomized Study. Respir Care. 2014 Sep;
  23. Riise GC, Ahlstedt S, Larsson S, Enander I, Jones I, Larsson P, et al. Bronchial inflammation in chronic bronchitis assessed by measurement of cell products in bronchial lavage fluid. Thorax. 1995 Apr;360–5.
  24. Vignola AM, Riccobono L, Mirabella A, Profita M, Chanez P, Bellia V, et al. Sputum metalloproteinase- ‐9/tissue inhibitor of metalloproteinase- ‐1 ratio correlates with airflow obstruction in asthma and chronic bronchitis. Am J Respir Crit Care Med. 1998 Dec;1945–50.
  25. Vogelmeier CF, Wouters EFM. Treating the systemic effects of chronic obstructive pulmonary disease. Proc Am Thorac Soc. 2011 Aug;376–9.
  26. Taggart C, Cervantes- ‐Laurean D, Kim G, McElvaney NG, Wehr N, Moss J, et al. Oxidation of either methionine 351 or methionine 358 in alpha 1- ‐antitrypsin causes loss of anti- ‐neutrophil elastase activity. J Biol Chem. 2000;27258–65.
  27. Wehrli M, Cortinas- ‐Elizondo F, Hlushchuk R, Daudel F, Villiger PM, Miescher S, et al. Human IgA Fc Receptor Fc RI (CD89) Triggers Different Forms of Neutrophil Death Depending on the Inflammatory Microenvironment. J Immunol. 2014 Oct;5649–59.
  28. Yang JJ, Preston GA, Pendergraft WF, Segelmark M, Heeringa P, Hogan SL, et al. Internalization of proteinase 3 is concomitant with endothelial cell apoptosis and internalization of myeloperoxidase with generation of intracellular oxidants. Am J Pathol. 2001;581–92.
  29. Vissers MC, George PM, Bathurst IC, Brennan SO, Winterbourn CC. Cleavage and inactivation of alpha 1- ‐antitrypsin by metalloproteinases released from neutrophils. J Clin Invest. 1988 Aug;706–11.
  30. Tecchio C, Micheletti A, Cassatella MA. Neutrophil- ‐Derived Cytokines: Facts Beyond Expression. Front Immunol. 2014 Oct;1–7.
  31. Richter J, Ng- ‐Sikorski J, Olsson I, Andersson T. Tumor necrosis factor- ‐induced degranulation in adherent human neutrophils is dependent on CD11b/CD18- ‐ integrin- ‐triggered oscillations of cytosolic free Ca2+. Proc Natl Acad Sci U S A. 1990 Dec;9472–6.
  32. Wewers MD, Casolaro MA, Sellers SE, Swayze SC, McPhaul KM, Wittes JT, et al. Replacement therapy for alpha 1- ‐antitrypsin deficiency associated with emphysema. N Engl J Med. 1987 Apr;1055–62.
  33. Sveger T. Liver disease in alpha1- ‐antitrypsin deficiency detected by screening of 200,000 infants. N Engl J Med. 1976 Jun;1316–21.
  34. Ueda M, Mashiba S, Uchida K. Evaluation of oxidized alpha- ‐1- ‐antitrypsin in blood as an oxidative stress marker using anti- ‐oxidative alpha1- ‐AT monoclonal antibody. Clin Chim Acta. 2002;125–31.
  35. Wedzicha JA, Seemungal TA. COPD exacerbations: defining their cause and prevention. Lancet. 2007;786–96.
  36. Subramaniyam D, Virtala R, Pawłowski K, Clausen IG, Warkentin S, Stevens T, et al. TNF- ‐alpha- ‐induced self expression in human lung endothelial cells is inhibited by native and oxidized alpha1- ‐antitrypsin. Int J Biochem Cell Biol. 2008 Jan;258– 71.
  37. Young RP, Hopkins R, Eaton TE. Pharmacological actions of statins: Potential utility in COPD. Eur Respir Rev. 2009;222–32.
  38. Ray MB, Geboes K, Callea F, Desmet VJ. Alpha- ‐1- ‐antitrypsin immunoreactivity in gastric carcinoid. Histopathology. 1982;289–97.


* Das Dokument ist im Internet frei zugänglich - Hinweise zu den Nutzungsrechten