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Titel:Der vaskuläre endotheliale Wachstumsfaktor VEGF hemmt die Endothelzellapoptose über Regulation von PARP
Autor:Hörmann, Mareike
Weitere Beteiligte: Al-Fakhri, Nadia (PD Dr.)
Veröffentlicht:2010
URI:https://archiv.ub.uni-marburg.de/diss/z2010/0255
URN: urn:nbn:de:hebis:04-z2010-02553
DOI: https://doi.org/10.17192/z2010.0255
DDC: Medizin
Titel (trans.):Vascular endothelial growth factor promotes endothelial survival by induction of poly(ADP-ribose)-polymerase expression in the human vasculature
Publikationsdatum:2010-04-27
Lizenz:https://rightsstatements.org/vocab/InC-NC/1.0/

Dokument

Schlagwörter:
Apoptosis, Vascular endothelial Growth Factor, VEGF, Atherosklerosis, Arteriosklerose, Apoptosis

Zusammenfassung:
Der vaskuläre endotheliale Wachstumsfaktor (VEGF) ist der stärkste Überlebensfaktor für Endothelzellen. Der anti-apoptotische Effekt von VEGF auf das Endothel ist allgemein bekannt, jedoch sind die Mechanismen, die zu der Apoptosehemmung führen, weitgehend unbekannt. Daher wurde die Hypothese untersucht, dass VEGF über die Regulation eines Caspasen-Mediators, wie Poly(ADP-ribose)-Polymerase (PARP), wirkt. In der vorliegenden Arbeit wird ein neuartiger Wirkmechanismus von VEGF über die Hochregulation des intrazellulären anti-apoptotischen Proteins PARP aufgezeigt. Endothelzellen, HUVEC sowie die Zelllinien EA.hy926 und hCMEC/D3, wurden mit VEGF in unterschiedlichen Konzentrationen (100 pg/ml - 1 µg/ml) inkubiert. VEGF induzierte in Endothelzellen dosisabhängig die Proteinexpression von PARP, wie mittels automatisierter Densitometrie von Western Blots gezeigt wurde. Die mRNA -Produktion von PARP war ebenfalls erhöht, wie in der Real-time RT-PCR demonstriert. VEGF induzierte auch eine erhöhte PARP-Aktivität, wie mithilfe des colorimetrischen PARP-Aktivitätsassays gezeigt. Wiederholte Zugabe von VEGF zu Endothelzellen alle 48 Stunden über eine Inkubationszeit von 6 Tagen führte zu einem stärkeren Anstieg der PARP- Protein- und mRNA-Produktion. Durch durchflusszytometrische Annexin V-FITC / Propidium-Jodid-Messung konnte gezeigt werden, dass VEGF in den untersuchten Konzentrationen die Sensitivität der Endothelzellen für Apoptose, induziert durch Adhäsions-Hemmung mithilfe des αv-Integrinantagonisten cRGDfV, um 60 % bei einmaliger Applikation und um 90 % bei dreimaliger Applikation von VEGF reduzieren konnte, im Vergleich zu Zellen, die nicht mit VEGF vorbehandelt worden waren. Die Induktion von PARP durch VEGF wurde auf der Ebene der Transkription reguliert, gezeigt durch Co-Inkubation mit Actinomycin D, ein potenter Inhibitor der Transkription. Inkubation mit Cycloheximid, einem Translationsinhibitor, hatte keinen Einfluss auf das PARP-Protein. Demzufolge erhöht VEGF die Genexpression von PARP. bFGF oder TGFβ hatten keinen Einfluss auf die PARP-Produktion, der beobachtete Effekt war daher VEGF-spezifisch. Der VEGF-Rezeptor-2 (VEGFR-2) wurde mittels Immunfluoreszenz auf Endothelzellen nachgewiesen. Ebenfalls konnte der VEGFR-2 Ko-Rezeptor Neuropilin-1 (NP-1) auf Endothelzellen nachgewiesen werden. In die Signaltransduktion von VEGF war VEGFR-2 involviert, wie Ko-Inkubationen mit dem VEGFR-2 Inhibitor SU5416 zeigen konnten. Downstream des Rezeptors wiesen wir die Beteiligung von SAPK/JNK und Akt nach. Um den direkten Zusammenhang zwischen VEGF und der Hochregulation von PARP nachzuweisen, wurden Endothelzellen mit PARP-siRNA behandelt und mit VEGF 100 pg/ml – 1 ng/ml präinkubiert. Transfektion mit PARP-siRNA führt zu einer fast vollständigen Reduktion der Expression von PARP-Protein in Endothelzellen. Mit PARP-siRNA transfizierte Endothelzellen zeigten keine Reduktion der im Durchflusszytometer gemessene Apoptoserate durch Präinkubation mit VEGF im Vergleich zu nicht-transfizierten Zellen, der PARP mRNA-Knockdown konnte also die Apoptosehemmung durch VEGF aufheben. Die vorliegenden Ergebnisse zeigen, dass VEGF einen Hauptteil seines anti-apoptotischen Effekts auf Endothelzellen über die Regulation der PARP-Expression ausübt. Die Hochregulierung des intrazellulären Proteins PARP durch VEGF könnte einen auto-protektiven Mechanismus der Gefäße zur Neutralisation der pro-apoptotischen Caspasen-Aktivität darstellen, um die endotheliale Empfindlichkeit gegenüber apoptotischen Stimuli zu reduzieren. Dieser Mechanismus könnte Einfluss haben auf die Angiogenese und die Entstehung von Arteriosklerose. Das Verständnis der schützenden Wirkungen von VEGF auf Endothelzellen ist der Schlüssel für die Entwicklung neuer Therapien der Arteriosklerose und anderer mit VEGF assoziierter Erkrankungen.

Bibliographie / References

  1. Liu B, Fang M, Lu Y, Mills GB, Fan Z. Involvement of JNK-mediated pathway in EGF-mediated protection against paclitaxel-induced apoptosis in SiHa human cervical cancer cells. Br J Cancer 2001; 85: 303-311
  2. Haunstetter A, Izumo S. Apoptosis: basic mechanisms and implications for cardiovascular disease. Circ Res 1998; 82: 1111-1129
  3. Mallat Z, Benamer H, Hugel B, Benessiano J, Steg PG, Freyssinet JM, Tedgui A. Elevated levels of shed membrane microparticles with procoagulant potential in the peripheral circulating blood of patients with acute coronary syndrome. Circulation 2000; 101: 841-843
  4. Janknecht R, Ernst WH, Pingoud V, Nordheim A. Activation of ternary complex factor Elk-1 by MAP kinases. EMBO J 1993; 12 (13): 5097-5104 ~ 103 ~
  5. Dimmeler S, Zeiher AM. Akt takes center stage in angiogenesis signalling. Circ Res 2000; 86: 4-5
  6. Kerr JFR, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. Br J Cancer 1972; 26: 239-257
  7. Lawen A. Apoptosis-an introduction. BioEssays 2003; 25: 888-896 ~ 104 ~
  8. Isner JM, Kearney M, Bortman S, Passeri J. Apoptosis in human atherosclerosis and restenosis. Circulation 1995; 91: 2703-2711
  9. Dimmeler S, Herrmann C, Zeiher AM. Apoptosis of endothelial cells. Contribution to the pathology of atherosclerosis? Eur Cytokine Netw 1998; 9: 697-698
  10. Fadok VA, Warner ML, Bratton DL, Henson PM. CD36 is required for phagocytosis of apoptotic cells by human macrophages that use either a phophatidylserine receptor or the vitronectin receptor (αvß3). J Immunol 1998; 161: 6250-6257
  11. Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during assembly of head of bacteriophage-T4. Nature 1970; 227: 680-685
  12. Mallat Z, Ohan J, Lesèche G, Tedgui A. Colocalization of CCP-32 with apoptotic cells in human atherosclerotic plaques. Circulation 1997; 96: 424- 428
  13. Hedin U, Roy J, Tran PK. Control of smooth muscle cell proliferation in vascular disease. Curr Opin Lipidol 2004; 15: 559-565
  14. Fadok VA, Savill JS, Haslett C, Bratton DL, Doherty DE, Campell PA, Henson PM. Different populations of macrophages use either the vitronectin receptor or the phophatidylserine receptor to recognize and remove apoptotic cells. J Immunol 1992; 149: 4029-4035
  15. Futami R, Miyashita M, Nomura T, Makino H, Matsutani T, Sasajima K, Tajiri T. Increased serum vascular endothelial growth factor following major surgical injury. J Nippon Med Sch 2007; 74 (3): 223-229
  16. Kim SJ. Insulin rapidly induces nuclear translocation of PI3-kinase in HepG2 cells. Biochem Mol Biol Int 1998; 46: 187-196
  17. Kim KY, Kim SO, Lim H, Yoo SE, Hong KW. KR-31372 inhibits KDR/Flk-1 tyrosine phosphorylation via K+ (ATP) channel opening in its antiangiogenic effect. Eur J Pharmacol 2003; 465 (3): 219-228
  18. Kyriakis JM, Avruch J. Mammalian mitogen-activated protein kinase pathways activated by stress and inflammation. Physiol Rev 2001; 81 (2): 807-869
  19. Downward J. Mechanisms and consequences of activation of protein kinase PI3/Akt. Curr Opin Cell Biol 1998; 10: 262-267
  20. Eccles SA, Welch DR. Metastasis: recent discoveries and novel treatment strategies. Lancet 2007; 369(9574): 1742-1757
  21. Geng YJ. Molecular signal transduction in vascular cell apoptosis. Cell Research 2001; 11(4): 253-264 ~ 102 ~
  22. Kowentz-Leutz E, Twamley G, Ansieau S, Leutz A. Novel mechanism of C/EBP beta (NF-M) transcriptional control: actvation through derepression.
  23. Irani K. Oxidant signalling in vascular cell growth, death, and survival-a review of the roles of reactive oxygen species in smooth muscle and endothelial cell mitogenic and apoptotic signalling. Circ Res 2000; 87: 179- 183
  24. Marchisio M, Bertagnolo V, Colamussi ML, Capitani S, Neri LM. Phophatidylinositol 3-kinase in HL-60 nuclei is bound to the nuclear matrix and increases during granulocytic differentiation. Biochem Biophys Res Commun 1998; 253: 346-351
  25. Lu PJ, Hsu AL, Wang DS, Yan HY, Yin HL, Chen CS. Phosphoionisitide 3- kinase in rat liver nuclei. Biochemistry 1998; 37: 5738-5745
  26. Lum H, Malik AB. Regulation of vascular endothelial barrier function. Am J Physiol 1994; 267: 223-241
  27. Fujikawa K, De Aos Scherpenseel I, Jain SK, Presman E, Varticovski L. Role of PI 3-Kinase in angiopoietin-1-mediated migration and attachement- dependent survival of endothelial cells. Exp Cell Res 1999; 253: 663-672
  28. Isacke C, Horton M. The adhesion molecule facts book. 2 nd Edition, London: Academic Press 2000: 187ff.
  29. Green D, Kroemer G. The central executioners of apoptosis: caspases or mitochondria? Trends Cell Biol 1998; 8: 267-271
  30. Marais R, Wynne J, Treisman R. The SRF accessory protein Elk-1 contains a growth factor-regulated transcriptional activation domain. Cell 1993; 73: 381-393
  31. Holvoet P, Collen D. Thrombosis and atherosclerosis. Curr Opin Lipidol 1997; 8 (5): 320-328
  32. Gerber HP, McMurtrey A, Kowalski J, Yan M, Keyt BA, Dixit V, Ferrara N. Vascular endothelial growth factor regulates endothelial cell survival through the phosphatidylinositol 3-Kinase/Akt signal transduction pathway. J Biol Chem 1998a; 273 (46): 30336-30343
  33. Juretic N, Santibanez JF, Hurtado C, Martinez J. ERK 1, 2 and p38 pathways are involved in proliferative stimuli mediated by urokinase in SaOS-2 cell line. J Cell Biochem 2001; 83 (1): 92-98
  34. Kaiser D, Freyberg MA, Friedl P. Lack of hemodynamic forces triggers apoptosis in vascular endothelial cells. Biochem Biophys Res Commun 1997; 231: 586-590
  35. Johnson GL, Lapadat R. Mitogen-activated protein kinase pathways mediated by ERK, JNK and p38 protein kinases. Science 2002; 298: 1911- 1912
  36. Levkau B, Herren B, Koyama H, Ross R, Raines EW. Caspase-mediated cleavage of focal adhesion kinase pp125FAK and disassembly of focal adhesions in human endothelial cell apoptosis. J Exp Red 1998; 187: 579- 586
  37. Fujio Y, Walsh K. Akt mediates cytoprotection of endothelial cells by vascular endothelial growth factor in an anchorage-dependent manner. J Biol Chem 1999; 274: 16349-16354
  38. Edgell CJ, McDonald CC, Graham JB. Permanent cell line expressing human factor VIII-related antigen established by hybridization. Proc Natl Acad Sci USA 1983; 80: 3734-3737
  39. Gille H, Kortenjann M, Thomae O, Moomaw C, Slaughter C, Cobb MH, Shaw PE. ERK phosphorylation potentiates Elk-1-mediated ternary complex formation and transactivation. EMBO J 1995; 14(5): 951-962
  40. Gotlieb AI, Silver MD. Atherosclerosis: pathology and pathogenesis. In: Silver MD, Gotlieb AI, Schoen FJ: Cardiovascular pathology. 3 rd Edition, Philadelphia/PA: Churchill/Livingstone; 2001: 68-106


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