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Titel:Posttranslationale Modifikation und subzelluläre Verteilung von Plakophilin 3 in normalen und Tumorzellen
Autor:Neuber, Steffen
Weitere Beteiligte: Renkawitz-Pohl, Renate
Veröffentlicht:2013
URI:https://archiv.ub.uni-marburg.de/diss/z2013/0350
DOI: https://doi.org/10.17192/z2013.0350
URN: urn:nbn:de:hebis:04-z2013-03509
DDC:570 Biowissenschaften, Biologie
Titel (trans.):Posttranslational modification and subcellular distribution of plakophilin 3 in normal and tumor cells
Publikationsdatum:2013-06-17
Lizenz:https://rightsstatements.org/vocab/InC-NC/1.0/

Dokument

Schlagwörter:
Adhesion, Phosphorylierung, Zelladhäsion, Desmosome, Phosphatasen, Wasserstoffperoxid, Prostatakrebs, Hydrogen peroxide, Kinase, Kinasen, Plakophilin 3

Zusammenfassung:
Die zelluläre Adhäsion stellt einen Eckpunkt für den evolutionären Erfolg mehrzelliger Organismen dar. Die Spezialisierung einzelner Zellen und das Entstehen komplexer funktioneller Einheiten manifestiert sich in verschiedensten Zell- und Gewebstypen. Desmosomen und Adhärenzverbindungen sind für die Bildung und Aufrechterhaltung dieser Gewebsstrukturen unerlässlich und ermöglichen auch deren funktionelle Dynamik. Eine wichtige strukturelle Komponente dieser Zell-Zell-Verbindungen sind Armadillo-Proteine. Diese fungieren allerdings nicht ausschließlich als Zelladhäsionsmoleküle, sondern übernehmen auch weitere zelluläre Aufgaben. Die verschiedenen funktionellen Eigenschaften der Armadillo-Proteine werden meist durch spezifische posttranslationale Modifikationen reguliert. Für einige Mitglieder der Proteinfamilie existieren bereits umfangreiche Studien, die sich mit der Dynamik der Moleküle infolge spezifischer Phosphorylierungen auseinandergesetzt haben. Regelmäßig wurden bei diesen Analysen Kinasen der Src-Familie und der epidermale Wachstumsfaktorrezeptor als katalysierende Proteine identifiziert. Im Zuge dieser Arbeit wurde das desmosomale Armadillo-Protein Plakophilin 3 auf das Vorhandensein von Proteinmodifikationen in normalen und Tumorzellen hin analysiert. Mittels zweidimensionaler Gelelektrophorese (IEF) wurde gezeigt, dass Plakophilin 3 Ziel post-translationaler Modifikationen ist, die sich zumindest teilweise auf Tyrosin-Phosphorylierungen zurückführen ließen. Aus einer entsprechenden Datenbank von Phospho-Proteinen wurden für Plakophilin 3 fünf Tyrosin-Reste und ein Serin-Rest, die einerseits häufig in Phosphoanalysen nachgewiesen wurden und andererseits von Relevanz für die Funktion des Proteins sein könnten, ausgewählt. Diese sechs Aminosäure-Reste wurden in Mutagenese-Experimenten substituiert und zur Konstruktion von PKP3-Einzelmutanten und PKP3-Kombinationsmutanten verwendet. Epitheliale Zellen wurden mit diesen unterschiedlichen PKP3-Konstrukten stabil transfiziert und mittels Immunofluoreszenz-Färbung und differentieller Extraktion untersucht. Eine funktionelle Bedeutung hinsichtlich der PKP3-Eigenschaften einzelner Modifikationen konnte hierbei bislang nicht nachgewiesen werden. Des weiteren wurden gegen die phosphorylierten Plakophilin 3-Sequenzen polyklonale Antiseren hergestellt. Aus einem der Seren konnten ausreichend sauber Phospho-spezifische Antikörper gegen den Tyrosin-Rest Y195 aufgereinigt werden. Mit Hilfe dieses Antikörpers wurde die Phosphorylierung von Plakophilin 3 an Y195 in in-vivo und in-vitro Experimenten untersucht. Plakophilin 3 wurde dabei durch Einsatz spezifischer Kinase-Inhibitoren und in einem in-vitro Kinase-Assay als neues Substrat der c-Src-Kinase identifiziert. Hierbei wurde festgestellt, dass die Phosphorylierung dieses Tyrosin-Restes streng reguliert wird und erst durch den Einsatz des Tyrosin-Phosphatase-Inhibitors Pervanadat detektiert werden kann. Wachstumsfaktoren wie EGF, IGF-1 oder HGF führten erstaunlicherweise zu keiner Phosphorylierung des spezifischen Tyrosin-Restes. Allerdings konnte die Tyrosin-Phosphorylierung durch Stimulation der Zellen mit Wasserstoff-Peroxid induziert werden. Dies legt nahe, dass PKP3 ein Zielmolekül des Src-vermittelten Signalwegs darstellt, welches in Abhängigkeit von reaktiven Sauerstoff-Spezies und oxidativem Stress an Y195 phosphoryliert wird. Immunfluoreszenz-Färbungen an c-Src-überexprimierenden Zellen zeigten, dass Y195-phosphoryliertes PKP3 an der desmosomalen Struktur lokalisiert. An dieser Stelle sind allerdings weitere funktionelle Untersuchungen notwendig, da die Tyrosin-Phosphorylierung von Plakophilin 3 in einigen Versuchen mit einem veränderten zellulären Löslichkeitsverhalten in Verbindung zu stehen schien, wobei diese Beobachtung bisher nicht mit einer einzelnen, spezifischen Phosphorylierung korreliert werden konnte. Somit hat die vorliegende Studie erstmals für das desmosomale Protein Plakophilin 3 die Existenz einer spezifischen Tyrosin-Phosphorylierung und einen damit assoziierten Signalweg aufgezeigt, deren zellbiologische Relevanz in weiterführenden Experimenten zu klären ist. Hinsichtlich maligner Tumoren konnte in früheren Arbeiten an Prostatakarzinomen ein höherer Malignitätsgrad sowohl mit einer erhöhten c-Src-Kinaseaktivität als auch mit einer gesteigerten Expression von Plakophilin 3 korreliert werden. Unter Berücksichtigung unserer experimentellen Daten wurden daraufhin Adenokarzinome der Prostata hinsichtlich des Auftretens der spezifischen Phosphorylierung von Plakophilin 3 immunhistochemisch untersucht. Hier wurde Y195-phosphoryliertes PKP3 in bestimmten Tumorarealen einiger schlecht differenzierter Adenokarzinome entlang von Zellgrenzen gefunden. Ob die untersuchte Modifikation unter Umständen eine diagnostische Relevanz hat, muss in weiterführenden Untersuchungen bestimmt werden.

Bibliographie / References

  1. Pietras K, Sjöblom T, Rubin K, Heldin CH, Ostman A. PDGF receptors as cancer drug targets. Cancer Cell 2003;3:439-443
  2. Schmidt A, Langbein L, Prätzel S, Rode M, Rackwitz HR, Franke WW. Plakophilin 3--a novel cell-type-specific desmosomal plaque protein. Differentiation 1999;64:291- 306
  3. Gaunt SJ, Subak-Sharpe JH. Selectivity in metabolic cooperation between cultured mammalian cells. Exp Cell Res 1979;120:307-320
  4. Hobmayer E, Hatta M, Fischer R, Fujisawa T, Holstein TW, Sugiyama T. Identification of a Hydra homologue of the beta-catenin/plakoglobin/armadillo gene family. Gene 1996;172:155-159
  5. Schmidt A, Jäger S. Plakophilins--hard work in the desmosome, recreation in the nucleus? Eur J Cell Biol 2005;84:189-204
  6. Gille J, Khalik M, König V, Kaufmann R. Hepatocyte growth factor/scatter factor (HGF/SF) induces vascular permeability factor (VPF/VEGF) expression by cultured keratinocytes. J Invest Dermatol 1998;111:1160-1165
  7. Playford MP, Bicknell D, Bodmer WF, Macaulay VM. Insulin-like growth factor 1 regulates the location, stability, and transcriptional activity of beta-catenin. Proc Natl Acad Sci U S A 2000;97:12103-12108
  8. Gaudry CA, Palka HL, Dusek RL, Huen AC, Khandekar MJ, Hudson LG, Green KJ. Tyrosine-phosphorylated plakoglobin is associated with desmogleins but not desmoplakin after epidermal growth factor receptor activation. J Biol Chem 2001;276:24871-24880
  9. Geiszt M, Leto TL. The Nox family of NAD(P)H oxidases: host defense and beyond. J Biol Chem 2004;279:51715-51718
  10. Roberts J, Herkert J, Rutberg J, Nikkel S, Wiesfeld A, Dooijes D, Gow R, van Tintelen J, Gollob M. Detection of genomic deletions of PKP2 in arrhythmogenic right ventricular cardiomyopathy. Clin Genet 2012;01950:1399-0004
  11. Zhuang S, Schnellmann RG. H2O2-induced transactivation of EGF receptor requires Src and mediates ERK1/2, but not Akt, activation in renal cells. Am J Physiol Renal Physiol 2004;286:F858-865
  12. Gerull B, Heuser A, Wichter T, Paul M, Basson CT, McDermott DA, Lerman BB, Markowitz SM, Ellinor PT, MacRae CA, Peters S, Grossmann KS, Drenckhahn J, Michely B, Sasse-Klaassen S, Birchmeier W, Dietz R, Breithardt G, Schulze-Bahr E, Thierfelder L. Mutations in the desmosomal protein plakophilin-2 are common in arrhythmogenic right ventricular cardiomyopathy. Nat Genet 2004;36:1162-1164
  13. Pieters T, van Roy F, van Hengel J. Functions of p120ctn isoforms in cell-cell adhesion and intracellular signaling. Front Biosci 2012;17:1669-1694
  14. Heid HW, Schmidt A, Zimbelmann R, Schäfer S, Winter-Simanowski S, Stumpp S, Keith M, Figge U, Schnölzer M, Franke WW. Cell type-specific desmosomal plaque proteins of the plakoglobin family: plakophilin 1 (band 6 protein). Differentiation 1994;58:113-131
  15. Xu G, Craig AW, Greer P, Miller M, Anastasiadis PZ, Lilien J, Balsamo J. Continuous association of cadherin with beta-catenin requires the non-receptor tyrosine- kinase Fer. J Cell Sci 2004;117:3207-3219
  16. Ratcliffe MJ, Rubin LL, Staddon JM. Dephosphorylation of the cadherin-associated p100/p120 proteins in response to activation of protein kinase C in epithelial cells. J Biol Chem 1997;272:31894-31901
  17. Harari PM. Epidermal growth factor receptor inhibition strategies in oncology. Endocr Relat Cancer 2004;11:689-708
  18. Zhang W, Lee JC, Kumar S, Gowen M. ERK pathway mediates the activation of Cdk2 in IGF-1-induced proliferation of human osteosarcoma MG-63 cells. J Bone Miner Res 1999;14:528-535
  19. In vitro cultivation of human tumors: establishment of cell lines derived from a series of solid tumors. J Natl Cancer Inst 1973;51:1417-1423
  20. Reynolds AB, Herbert L, Cleveland JL, Berg ST, Gaut JR. p120, a novel substrate of protein tyrosine kinase receptors and of p60v-src, is related to cadherin-binding factors beta-catenin, plakoglobin and armadillo. Oncogene 1992;7:2439-2445
  21. Piedra J, Miravet S, Castaño J, Pálmer HG, Heisterkamp N, García de Herreros A, Duñach M. p120 Catenin-associated Fer and Fyn tyrosine kinases regulate beta- catenin Tyr-142 phosphorylation and beta-catenin-alpha-catenin Interaction. Mol Cell Biol 2003;23:2287-2297
  22. Plakophilins 1a and 1b: widespread nuclear proteins recruited in specific epithelial cells as desmosomal plaque components. Cell Tissue Res 1997;290:481-499
  23. Hatzfeld M. Plakophilins: Multifunctional proteins or just regulators of desmosomal adhesion? Biochim Biophys Acta 2007;1773:69-77
  24. Zhu K, Zhao J, Lubman DM, Miller FR, Barder TJ. Protein pI shifts due to posttranslational modifications in the separation and characterization of proteins. Anal Chem 2005;77:2745-2755
  25. Perlmutter RM, Marth JD, Lewis DB, Steven RP, Ziegler F, Wilson CB. Structure and expression of Ick transcripts in human lymphoid cells. J Cell Biochem 1988;38:117- 126
  26. Rider LG, Raben N, Miller L, Jelsema C. The cDNAs encoding two forms of the LYN protein tyrosine kinase are expressed in rat mast cells and human myeloid cells. Gene 1994;138:219-222
  27. Hatzfeld M. The p120 family of cell adhesion molecules. Eur J Cell Biol 2005;84:205- 214
  28. Gupta-Elera G, Garrett AR, Robison RA, O'Neill KL. The role of oxidative stress in prostate cancer. Eur J Cancer Prev 2012;21:155-162
  29. Peus D, Vasa RA, Beyerle A, Meves A, Krautmacher C, Pittelkow MR. UVB activates ERK1/2 and p38 signaling pathways via reactive oxygen species in cultured keratinocytes. J Invest Dermatol 1999;112:751-756
  30. Schmidt A, Heid HW, Schäfer S, Nuber UA, Zimbelmann R, Franke WW. Desmosomes and cytoskeletal architecture in epithelial differentiation: cell type-specific plaque components and intermediate filament anchorage. Eur J Cell Biol 1994;65:229- 245
  31. Pokutta S, Herrenknecht K, Kemler R, Engel J. Conformational changes of the recombinant extracellular domain of E-cadherin upon calcium binding. Eur J Biochem 1994;223:1019-1026
  32. Xia X, Mariner DJ, Reynolds AB. Adhesion-associated and PKC-modulated changes in serine/threonine phosphorylation of p120-catenin. Biochemistry 2003;42:9195-9204
  33. Zhang Y, Wolf-Yadlin A, Ross PL, Pappin DJ, Rush J, Lauffenburger DA, White FM. Time-resolved mass spectrometry of tyrosine phosphorylation sites in the epidermal growth factor receptor signaling network reveals dynamic modules. Mol Cell Proteomics 2005;4:1240-1250
  34. Goodenough DA, Goliger JA, Paul DL. Connexins, connexons, and intercellular communication. Annu Rev Biochem 1996;65:475-502
  35. Roura S, Miravet S, Piedra J, García de Herreros A, Duñach M. Regulation of E- cadherin/Catenin association by tyrosine phosphorylation. J Biol Chem 1999;274:36734-36740
  36. Giepmans BN. Role of connexin43-interacting proteins at gap junctions. Adv Cardiol 2006;42:41-56
  37. Yeatman TJ. A renaissance for SRC. Nat Rev Cancer 2004;4:470-480
  38. Harris TJ, Tepass U. Adherens junctions: from molecules to morphogenesis. Nat Rev Mol Cell Biol 2010;11:502-514
  39. Rao RK, Basuroy S, Rao VU, Karnaky Jr KJ, Gupta A. Tyrosine phosphorylation and dissociation of occludin-ZO-1 and E-cadherin-beta-catenin complexes from the cytoskeleton by oxidative stress. Biochem J 2002;368:471-481
  40. Grossmann KS, Grund C, Huelsken J, Behrend M, Erdmann B, Franke WW, Birchmeier W. Requirement of plakophilin 2 for heart morphogenesis and cardiac junction formation. J Cell Biol 2004;167:149-160
  41. Hatzfeld M, Haffner C, Schulze K, Vinzens U. The function of plakophilin 1 in desmosome assembly and actin filament organization. J Cell Biol 2000;149:209-222
  42. Guo A, Villén J, Kornhauser J, Lee KA, Stokes MP, Rikova K, Possemato A, Nardone J, Innocenti G, Wetzel R, Wang Y, MacNeill J, Mitchell J, Gygi SP, Rush J, Polakiewicz RD, Comb MJ. Signaling networks assembled by oncogenic EGFR and c-Met. Proc Natl Acad Sci U S A 2008;105:692-697
  43. Garrod D, Fisher C, Smith A, Nie Z. Pervanadate stabilizes desmosomes. Cell Adh Migr 2008b;2:161–166
  44. Saksena S, Gill RK, Tyagi S, Alrefai WA, Ramaswamy K, Dudeja PK. Role of Fyn and PI3K in H2O2-induced inhibition of apical Cl-/OH-exchange activity in human intestinal epithelial cells. Biochem J 2008;416:99-108
  45. Posadas EM, Al-Ahmadie H, Robinson VL, Jagadeeswaran R, Otto K, Kasza KE, Tretiakov M, Siddiqui J, Pienta KJ, Stadler WM, Rinker-Schaeffer C, Salgia R. FYN is overexpressed in human prostate cancer. BJU Int 2009;103:171-177
  46. Green KJ, Getsios S, Troyanovsky S, Godsel LM. Intercellular Junction Assembly, Dynamics, and Homeostasis. Cold Spring Harb Perspect Biol 2010;2:a000125
  47. Saito YD, Jensen AR, Salgia R, Posadas EM. Fyn: a novel molecular target in cancer. Cancer 2010;116:1629-1637
  48. Heibeck TH, Ding SJ, Opresko LK, Zhao R, Schepmoes AA, Yang F, Tolmachev AV, Monroe ME, Camp DG 2nd, Smith RD, Wiley HS, Qian WJ. An extensive survey of tyrosine phosphorylation revealing new sites in human mammary epithelial cells. J Proteome Res 2009;8:3852-3861
  49. Quintrell N, Lebo R, Varmus H, Bishop JM, Pettenati MJ, Le Beau MM, Diaz MO, Rowley JD. Identification of a human gene (HCK) that encodes a protein-tyrosine kinase and is expressed in hemopoietic cells. Mol Cell Biol 1987;7:2267-2275
  50. Hecht D, Zick Y. Selective inhibition of protein tyrosine phosphatase activities by H2O2 and vanadate in vitro. Biochem Biophys Res Commun 1992;188:773-779
  51. Recchia I, Rucci N, Festuccia C, Bologna M, MacKay AR, Migliaccio S, Longo M, Susa M, Fabbro D, Teti A. Pyrrolopyrimidine c-Src inhibitors reduce growth, adhesion, motility and invasion of prostate cancer cells in vitro. Eur J Cancer 2003;39:1927-1935
  52. Yin T, Green KJ. Regulation of desmosome assembly and adhesion. Semin Cell Dev Biol 2004;15:665-677


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