Publikationsserver der Universitätsbibliothek Marburg

Titel:Vesikulärer Transfer ("Transsekretion") von Membrankomponenten auf bovine Nebenhodenspermien
Autor:Schwarz, Anja
Weitere Beteiligte: Wilhelm, Beate (Dr.)
Veröffentlicht:2011
URI:https://archiv.ub.uni-marburg.de/diss/z2012/0271
DOI: https://doi.org/10.17192/z2012.0271
URN: urn:nbn:de:hebis:04-z2012-02712
DDC: Naturwissenschaften
Titel (trans.):The vesicle transfer ("trans secretion") of membrane components to bovine epididymal sperm
Publikationsdatum:2012-05-18
Lizenz:https://rightsstatements.org/vocab/InC-NC/1.0/

Dokument

Schlagwörter:
PMCA, Sperm, Epididymosomes, Transsekretion, Epididymosomen, Nebenhoden, PMCA, Trans secretion, apokrine Sekretion, Epididymis, Apocrin secretion, Ca2+-ATPase-Aktivität, Ca2+-ATPase-activity, Spermium

Zusammenfassung:
Bei der Passage durch den männlichen Reproduktionstrakt interagieren Spermatozoen mit Faktoren, die u.a. vom Nebenhoden sezerniert werden. Die daraus resultierende Modifikation der Spermatozoen ist essentiell für die Ausreifung zu voll funktionsfähigen Keimzellen. Bei der Ausdifferenzierung im Nebenhoden spielen vermutlich u. a. auch die Epididymosomen (apokrin sekretierte Nebenhodenvesikel) eine wichtige Rolle. In vorausgehenden Untersuchungen unserer Arbeitsgruppe konnte gezeigt werden, dass sich die Plasmamembran-Ca2+-ATPase Isoform 4 (PMCA4) Spleißvarianten-Ausstattung in der Membran von Bullenspermien von PMCA4b in Caputspermien zu PMCA4a in Caudaspermien ändert. Zudem nahm auch die Ca2+-ATPase Aktivität der Spermien während der Passage durch den Nebenhoden signifikant zu. Die Möglichkeit eines Transfers der PMCA4a von Epididymosomen auf Spermien wurde postuliert (Sanchez-Luengo et al. 2004,Brandenburger et al. 2011). Ziel der vorliegenden Arbeit war es, die fusogene Eigenschaft boviner Epididymosomen näher zu untersuchen. Dafür wurden Nebenhodenvesikel aus den verschiedenen Nebenhodenabschnitten isoliert und sowohl morphologisch, als auch biochemisch charakterisiert. Weiterhin wurde der vesikuläre Transfer von Membrankomponenten (Lipide, Proteine) und speziell der potentielle Transfer der PMCA auf bovine Nebenhodenspermien untersucht. Elektronenmikroskopische ntersuchungen zeigten, dass Cauda Epididymosomen größer sind als Caput Epididymosomen. Lipidanalysen von Caput- und Cauda Epididymosomen belegten eine Zunahme des Cholesterin/Phospholipid-Verhältnisses bei einer Abnahme der Cholesterol- und der Phospholipidkonzentration. Hauptanteilig konnten die Phospholipide Phosphatidyethanolamin (PE), Phosphatidylcholin (PC) und Sphingomyelin(SM) nachgewiesen werden, wobei sich der Gehalt in Caput- und Cauda Epididymosomen nicht signifikant veränderte. Bei der Proteinanalyse spezialisierte sich die Autorin auf die PMCA. Mittels Westernblot-Analysen konnte gezeigt werden, dass in Cauda Vesikeln mehr PMCA4a nachzuweisen war als in Caput Vesikeln. Auch die Ca2+-ATPase Aktivität stieg von Caput- zu Cauda Epididymosomen signifikant an. Um in in vitro Experimenten die fusogene Eigenschaft der Epididymosomen mit Spermien zu untersuchen, wurden bovine Epididymosomen mit dem Fluoreszenzfarbstoff Octadecylrhodamin B (R18) markiert. Für Caputspermien konnte eine höhere Fusionsrate als für Caudaspermien nachgewiesen werden. Der für die Fusion optimale pH lag dabei im sauren Bereich (pH 5 - 6). Lipidanalysen von Nebenhodenspermien belegten eine Abnahme des Cholesterin/Phospholipid-Verhältnisses von Caput- zu Caudaspermien. Dies konnte auch nach in vitro Fusion von Caputspermien mit Epididymosomen erzielt werden. Daher wird postuliert, dass diese Veränderungen ein Ergebnis aus der Interaktion der Spermien mit den Epididymosomen sind. In vivo konnte in Spermien eine Abnahme von PE, PC und SM im Verlauf des Nebenhodentraktes dokumentiert werden, die jedoch in vitro nicht nachgeahmt werden konnte. Nach Markierung der Epididymosomen mit Biotin konnte eine Übertragung Biotin-markierter Proteine von Epididymosomen auf die Nebenhodenspermienmembran mittels in vitro Fusion gezeigt werden. Die Ca2+-ATPase-Aktivität nahm zwar signifikant nach in vitro Fusion von Epididymosomen mit Nebenhodenspermien zu, ob aber auch die PMCA4a übertragen wird, konnte mittels Immunhistologie nicht abschließend geklärt werden, da der Antikörper gegen die Spleißvariante PMCA4a auf Spermienausstrichen unzureichend färbte. Lediglich mit dem Antikörper gegen PMCA4 konnte eine leichte Fluoreszenzzunahme im Mittelstück dokumentiert werden, die auf eine Übertragung hindeuten könnte. Weiterhin konnte in vorausgehenden Untersuchungen unserer Arbeitsgruppe gezeigt werden, dass die Ca2+-ATPase Aktivität in Nebenhodenspermien organspezifisch (z.B. keine signifikante Stimulation in Herz und Niere) durch das Bläschendrüsenprotein PDC-109 signifikant stimuliert werden kann (Sanchez-Luengo et al. 2004). Diese Stimulation konnte in der vorliegenden Arbeit auch für Epididymosomen und Spermien nach in vitro Fusion dokumentiert werden. Es ist bekannt, dass PDC-109 an Phospholipide bindet und auch die Aktivität der PMCA durch Phospholipide beeinflusst werden kann. Weitere Untersuchungen müssen zeigen, ob es einen Zusammenhang zwischen der Lipidveränderung und der erhöhten Ca2+-ATPase Aktivität in Spermien nach der Fusion gibt. Zusammenfassend führt die Transsekretion (Zell-zu-Zelltransfer) zwischen Epididymosomen und Spermien zur Übertragung von Lipiden und Proteinen mit Einfluss auf die Ca2+-ATPase-Aktivität.

Bibliographie / References

  1. Visconti PE, Moore GD, Bailey JL, Leclerc P, Connors SA, Pan D, Olds-Clarke P & Kopf GS 1995 Capacitation of mouse spermatozoa. II. Protein tyrosine phosphorylation and capacitation are regulated by a cAMP-dependent pathway. Develop 121 (4) 1139-1150.
  2. Suarez SS 2008 Control of hyperactivation in sperm. Human Reprod Update 14(6) 647–657
  3. Kirchhoff C & Hale G 1996 Cell-to-cell transfer of glycosylphosphatidylinositol- anchored membrane proteins during sperm maturation. Mol Hum Reprod 2 177- 184.
  4. Vijayasarathy S, Shivaji S & Balaram P 1980 Plasma membrane bound Ca2+- ATPase activity in bull sperm. FEBS Lett 114 45-47.
  5. Characterization and identification of proteins secreted in the various regions of the adult boar epididymis. Biol Reprod 55 956-974.
  6. Therien I, Bleau G & Manjunath P 1995 Phosphatidylcholine-binding proteins of bovine seminal plasma modulate capacitation of spermatozoa by heparin. Biol Reprod 52 1372-1379.
  7. Thimon V, Frenette G, Saez F, Thabet M & Sullivan R 2008 Protein composition of human epididymosomes collected during surgical vasectomy reversal: a proteomic and genomic approach. Hum Reprod 23 1698-1707.
  8. Plasma membrane Ca2+ ATPase isoform 4b binds to membrane-associated guanylate kinase (MAGUK) proteins via their PDZ (PSD-95/Dlg/ZO-1) domains.
  9. Kim E, Niethammer M, Rothschild A, Jan YN & Sheng M 1995 Clustering of Shaker-type K+ channels by interaction with a family of membrane-associated guanylate kinases. Nature 378 85-88.
  10. Plasma membrane Ca2+ ATPase 4 is required for sperm motility and male fertility. J Biol Chem 279 28220-28226.
  11. Kaupp UB, Hildebrand E & Weyand I 2006 Sperm chemotaxis in marine invertebrates--molecules and mechanisms. J Cell Physiol 208 487-494.
  12. Vanithakumari G & Govindarajulu P 1985 Adenosine triphosphatase systems in genital tract of testosterone treated male adult monkeys. Indian J Physiol Pharmacol 29 1-6.
  13. Ronner P, Gazzotti P & Carafoli E 1977 A lipid requirement for the (Ca2+ + Mg2+)-activated ATPase of erythrocyte membranes. Arch Biochem Biophys 179 578-583.
  14. Sikdar R, Ganguly U, Pal P, Mazumder B & Sen PC 1991 Biochemical characterization of a calcium ion stimulated-ATPase from goat spermatozoa.
  15. Reinhardt TA & Horst RL 1999 Ca2+-ATPases and their expression in the mammary gland of pregnant and lactating rats. Am J Physiol 276 C796-802.
  16. Robinson JD 1976 (Ca + Mg)-stimulated ATPase activity of a rat brain microsomal preparation. Arch Biochem Biophys 176 366-374.
  17. Vijayaraghavan S & Hoskins DD 1990 Changes in the mitochondrial calcium influx and efflux properties are responsible for the decline in sperm calcium during epididymal maturation. Mol Reprod Dev 25 186-194.
  18. Stokes DL, Auer M, Zhang P & Kuhlbrandt W 1999 Comparison of H+-ATPase and Ca2+-ATPase suggests that a large conformational change initiates P-type ion pump reaction cycles. Curr Biol 9 672-679.
  19. Verma AK, Filoteo AG, Stanford DR, Wieben ED, Penniston JT, Strehler EE, Fischer R, Heim R, Vogel G, Mathews S, Strehler-Page M, James P, Vorher T, Krebs J & Carafoli E 1988 Complete primary structure of a human plasma membrane Ca2+ pump. J Biol Cem 263 14152-14159.
  20. Kurosumi K, Shibasaki S & Ito T 1984 Cytology of the secretion in mammalian sweat gland. Int Rev Cytol 87 253-329.
  21. Wilhelm B, Keppler C, Hoffbauer G, Lottspeich F, Linder D, Meinhardt A, Aumuller G & Seitz J 1998 Cytoplasmic carbonic anhydrase II of rat coagulating gland is secreted via the apocrine export mode. J Histochem Cytochem 46 505- 511.
  22. Serres C, Feneux D & Berthon B 1991 Decrease of internal free calcium and human sperm movement. Cell Motil Cytoskeleton 18 228-240.
  23. Zacharias DA & Kappen C 1999 Developmental expression of the four plasma membrane calcium ATPase (Pmca) genes in the mouse. Biochim Biophys Acta 1428 397-405.
  24. Vreeburg JT 1975 Distribution of testosterone and 5alpha-dihydrotestosterone in rat epididymis and their concentrations in efferent duct fluid. J Endocrinol 67 203-210.
  25. Ramos AS, Jr. & Dym M 1977 Fine structure of the monkey epididymis. Am J Anat 149 501-531.
  26. Ronquist G 1987 Effect of modulators on prostasome membrane-bound ATPase in human seminal plasma. Eur J Clin Invest 17 231-236.
  27. Williams KM & Ford WC 2003 Effects of Ca-ATPase inhibitors on the intracellular calcium activity and motility of human spermatozoa. Int J Androl 26 366-375.
  28. Lakoski KA, Carron CP, Cabot CL & Saling PM 1988 Epididymal maturation and the acrosome reaction in mouse sperm: response to zona pellucida develops coincident with modification of M42 antigen. Biol Reprod 38 221-233.
  29. Preiano BS, Guerini D & Carafoli E 1996 Expression and functional characterization of isoforms 4 of the plasma membrane calcium pump. Biochemistry 35 7946-7953.
  30. Wilhelm B, Brandenburger T, Post H & Aumuller G 2008 Expression and localization of PMCA4 in rat testis and epididymis. Histochem Cell Biol 129 331- 343.
  31. Abb. 44: Fluoreszenzmessung am Delta Scan Illuminationssystem (Emission λ= 580, Extinktion λ= 560). Nach Zugabe von R18 markierten Epididymosomen (e) (bei t= 30 sec.) zu unmarkierten bovinen Nebenhodenspermien (s) konnte ein Anstieg der Fluoreszenz gemessen werden. Die Messung wurde im Puffer mit 0,32 mol/L Sucrose mit 20 mmol/L MES bei pH= 5 durchgeführt. Nach ca. t= 600 sec. erfolgte die Zugabe von 1% TritonX-100 (v/v, Endkonzentration), wodurch der maximale Fluoreszenzanstieg erreicht werden konnte. Die Abbildung zeigt exemplarisch eine Messung, von jeder Spermien/Vesikel-Kombination.
  32. Rejraji H, Vernet P & Drevet JR 2002 GPX5 is present in the mouse caput and cauda epididymidis lumen at three different locations. Mol Reprod Dev 63 96- 103.
  33. Hormonally induced changes in apocrine secretion of transglutaminase in the rat dorsal prostate and coagulating gland. Eur J Cell Biol 65 49-59.
  34. Seitz J, Keppler C, Rausch U & Aumuller G 1990 Immunohistochemistry of secretory transglutaminase from rodent prostate. Histochemistry 93 525-530.
  35. Sanchez-Luengo S, Aumuller G, Albrecht M, Sen PC, Rohm K & Wilhelm B 2004 Interaction of PDC-109, the major secretory protein from bull seminal vesicles, with bovine sperm membrane Ca2+-ATPase. J Androl 25 234-244.
  36. Yeung CH, Schroter S, Wagenfeld A, Kirchhoff C, Kliesch S, Poser D, Weinbauer GF, Nieschlag E & Cooper TG 1997 Interaction of the human epididymal protein CD52 (HE5) with epididymal spermatozoa from men and cynomolgus monkeys. Mol Reprod Dev 48 267-275.
  37. Kirchhoff C 1996 CD52 is the 'major maturation-associated' sperm membrane antigen. Molecular Human Reproduction 2 (1) 9-17
  38. Rana AP, Majumder GC, Misra S & Ghosh A 1991 Lipid changes of goat sperm plasma membrane during epididymal maturation. Biochim Biophys Acta 1061 185-196.
  39. Simons K & Toomre D 2000 Lipid rafts and signal transduction. Nat Rev Mol Cell Biol 1 (1) 31-39
  40. Triphan J, Aumuller G, Brandenburger T & Wilhelm B 2007 Localization and regulation of plasma membrane Ca(2+)-ATPase in bovine spermatozoa. Eur J Cell Biol 86 265-273.
  41. Localization of two genes encoding plasma membrane Ca2+ ATPases isoforms 2 (ATP2B2) and 3 (ATP2B3) to human chromosomes 3p26-->p25 and Xq28, respectively. Cytogenet Cell Genet 67 41-45.
  42. Mapping of functional domains in the plasma membrane Ca2+ pump using trypsin proteolysis. Biochemistry 29 8070-8076.
  43. Maturation of spermatozoa in the epididymis of the Chinese hamster. Am J Anat 172 317-330.
  44. Shull GE & Greeb J 1988 Molecular cloning of two isoforms of the plasma membrane Ca2+-transporting ATPase from rat brain. Structural and functional domains exhibit similarity to Na+,K+-and other cation transport ATPases. J Biol Chem 263 8646-8657
  45. Street VA, McKee-Johnson JW, Fonseca RC, Tempel BL & Noben-Trauth K 1998 Mutations in a plasma membrane Ca2+-ATPase gene cause deafness in deafwaddler mice. Nat Genet 19 390-394.
  46. Santamarina E & Recce RP 1957 Normal development of the germinal epithelium and seminiferous tubules in the bull. Am J Vet Res 18 (67) 261-278.
  47. On the androgen microenvironment of maturing spermatozoa. Endocrinology 115 1925-1932.
  48. Legare C, Gaudreanet c, St-Jaques S & Sullivan R 1999b P34h sperm protein is preferentially expressed by the human corpus epididymidis. Endocrinology 140 (7) 3318–3327
  49. Syntin P, Dacheux JL & Dacheux F 1999 Postnatal development and regulation of proteins secreted in the boar epididymis. Biol Reprod 61 1622-1635.
  50. Postvasectomy alterations in protein synthesis and secretion in the rat caput epididymidis are not repaired after vasovasostomy. J Androl 21 276-290.
  51. James P, Pruschy M, Vorherr TE, Penniston JT & Carafoli E 1989 Primary structure of the cAMP-dependent phosphorylation site of the plasma membrane calcium pump. Biochemistry 28 4253-4258
  52. pump of human erythrocytes. J Biol Chem 263 2905-2910.
  53. Stauffer TP, Hilfiker H, Carafoli E & Strehler EE 1993 Quantitative analysis of alternative splicing options of human plasma membrane calcium pump genes. J Biol Chem 268 25993-26003.
  54. Strehler EE & Zacharias DA 2001 Role of Alternative Splicing in Generating Isoform Diversity Among Plasma Membrane Calcium Pumps. Physiol Rev 81 21-50
  55. Saling PM 1982 Development of the ability to bind to zonae pellucidae during epididymal maturation: reversible immobilization of mouse-spermatozoaby lanthanum. Biol Reprod 26 (3) 429-436.
  56. Schiefferdecker 1922 Die Hautdrüsen des Menschen und der Säugetiere, ihre biologische und rassenanatomische Bedeutung, sowie die muscularis sexualis.
  57. Schaumburg-Lever G & Lever WF 1975 Secretion from human apocrine glands: an electron microscopic study. J Invest Dermatol 64 38-41.
  58. Strehler EE 1990 Plasma membrane Ca2+ pumps and Na+/Ca2+ exchangers.
  59. Vilsen B 1995 Structure-function relationships in the Ca(2+)-ATPase of sarcoplasmic reticulum studied by use of the substrate analogue CrATP and site-directed mutagenesis. Comparison with the Na+,K(+)-ATPase. Acta Physiol Scand Suppl 624 1-146.
  60. Subbarow CHFaY 1925. J Biol Chem 66 375.
  61. James P, Zvaritch EI, Shakhparonov MI, Penniston JT & Carafoli E 1987 The amino acid sequence of the phosphorylation domain of the erythrocyte Ca2+ ATPase. Biochem Biophys Res Commun 149 7-12.
  62. Wuytack F & Raemaekers L 1992 The Ca(2+)-transport ATPase from the plasma membrane. J Bioenerg Biomembr 24 (3) 285-300
  63. Knobil E & Neill J 1988 The physiology of Reproduction. Raven Press, Ltd. New York.
  64. Ronquist G & Brody I 1985 The prostasome: its secretion and function in man. Biochim Biophys Acta 822 203-218.
  65. Stauffer TP, Guerini D & Carafoli E 1995 Tissue distribution of the four gene products of the plasma membrane Ca2+ pump. A study using specific antibodies. J Biol Chem 270 12184-12190.
  66. Zarintash RJ & Cross NL 1996 Unesterified cholesterol content of human sperm regulates the response of the acrosome to the agonist, progesterone. Biol Reprod 55 19-24.
  67. Schuh K, Uldrijan S., Gambaryan S., Roethlein N. & Neyses L. 2003 Interaction of the Plasma Membrane Ca2+ Pump 4b/CI with the Ca2/Calmodulin- dependent Membrane-associated Kinase CASK. J Biol Chem 278 (11) 9778– 9783
  68. Rejraji H, Sion B, Prensier G, Carreras M, Motta C, Frenoux JM, Vericel E, Grizard G, Vernet P & Drevet JR 2006 Lipid remodeling of murine epididymosomes and spermatozoa during epididymal maturation. Biol Reprod 74 1104-1113.
  69. Membrane insertion and lipid-protein interactions of bovine seminal plasma protein PDC-109 investigated by spin-label electron spin resonance spectroscopy. Biophys J 81 2215-2225.
  70. Levine N & Marsh DJ 1971 Micropuncture studies of the electrochemical aspects of fluid and electrolyte transport in individual seminiferous tubules, the epididymis and the vas deferens in rats. J Physiol 213 557-570.
  71. Reuter H & Seitz N 1968 The dependence of calcium efflux from cardiac muscle on temperature and external ion composition. J Physiol 195 451-470.
  72. Wennemuth G, Babcock DF & Hille B 2003 Calcium clearance mechanisms of mouse sperm. J Gen Physiol 122 115-128.
  73. Sullivan R, Frenette G & Girouard J 2007 Epididymosomes are involved in the acquisition of new sperm proteins during epididymal transit. Asian J Androl 9 483-491.
  74. Suarez SS, Varosi SM & Dai X 1993 Intracellular calcium increases with hyperactivation in intact, moving hamster sperm and oscillates with the flagellar beat cycle. Proc Natl Acad Sci USA 90 4660-4664
  75. Simons K & Ikonen E 1997 Functional rafts in cell membranes. Nature 387 569- 572.


* Das Dokument ist im Internet frei zugänglich - Hinweise zu den Nutzungsrechten